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GMS150高精度气体调控系统

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北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年,为国家*,致力于生态-农业-健康研究监测技术推广、研发与服务,特别是在光谱成像技术(高光谱成像技术、叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术、无人机遥感等)、植物表型分析技术、呼吸与能量代谢测量技术等方面,与企业PSI、Specim、Sable等合作,致力于植物科学、土壤与地球科学、动物能量代谢、水体与藻类及生态环境领域*仪器技术的引进推广和技术研发集成,为植物/作物表型分析、生态修复及生态保护、能量代谢测量等提供规划设计、技术方案与系统集成、技术咨询与科技服务。公司技术团队80%以上具备硕士或硕士以上学位,并与*研究生院、中科院植物研究所、中科院动物所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学、中国海洋大学、陕西师范大学、内蒙古大学等建立了*的技术合作交流关系。 公司下设有叶绿素荧光技术与植物表型业务部、EcoLab?实验室、光谱成像与无人机遥感事业部及无人机遥感研究中心(与陕西师范大学合作建立)、动物能量代谢实验室、内蒙古阿拉善蒙古牛生态牧业研究院及青岛分公司。实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、SPECIM高光谱仪、WORKSWELL红外热成像仪、EasyChem*、MicroMac1000水质在线监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro+光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、年轮分析仪等各种仪器设备,可以进行实验研究分析、实验培训等,欢迎与易科泰生态研究室开展合作研究。 易科泰公司与欧洲PSI公司(叶绿素荧光技术与表型分析技术)、美国SABLE公司(动物能量代谢技术)、欧洲SPECIM公司(高光谱成像技术)、欧洲WORKSWELL公司(红外热成像技术)、欧洲Lightigo公司(LIBS元素分析技术)、欧洲BCN无人机遥感中心、欧洲ITRAX公司(样芯密度扫描与元素分析)、美国VERIS公司、英国ADC公司、德国UGT公司、欧洲SYSTEA公司等*生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系,在FluorCam叶绿素荧光成像与荧光测量技术、PlantScreen植物表型分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、光合作用与植物生态研究监测、土壤呼吸与碳通量研究监测、动物呼吸代谢测量、水质分析与藻类研究监测、CoreScanner样芯密度CT与元素分析技术、LIBS元素分析技术、无人机生态遥感技术等生态仪器技术及其系统方案集成有着丰富的经验,成为我国农业、林业、地球科学、生态环境研究等领域科技进步的重要研究力量。由公司研制生产的EcoDrone?无人机遥感平台、SoilTron?多功能小型蒸渗仪技术、SoilBox?土壤呼吸测量技术、PhenoPlot?轻便型作物表型分析系统、SCG-N土壤剖面CO2/O2梯度监测系统、植物生态监测技术、动物能量代谢测量技术等,在中科院修购项目、*学科群项目、CERN网络(生态系统监测网络)等项目中发挥重要作用 “工欲善其事,必先利其器”,易科泰公司将秉承“利其器,善其事”的经营理念,为国内生态-农业-健康研究与发展提供的技术方案和服务。
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GMS150高精度气体调控系统 产品信息

GMS150高精度气体调控系统可以将多4种不同气体进行精确混合。每路输入气体的流量使用热式质量流量计精确测量,并由内置的质量流量控制器进行精准控制,输出的是*混合的均质气体。气体输入输出使用Prestolok快速安全接头,保证使用过程中的便捷性与安全性。

GMS150高精度气体调控系统可用于二氧化碳、氮气、一氧化碳、甲烷、氨气以及其他气体的浓度控制。

GMS150高精度气体调控系统分为GMS150版和GMS150-MICRO版,其中GMS150版精度更高,GMS150-MICRO版可调控流速更大。

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应用领域:

Ÿ与植物培养箱、光养生物反应器等联用,进行精确气体控制培养

Ÿ模拟不同CO2浓度环境,研究温室效应对植物/藻类的影响

Ÿ研究CO2浓度与光合作用的关系

Ÿ模拟烟气等有害气体对植物/藻类的影响

Ÿ研究植物/藻类对有害气体的处理与利用

技术参数:

Ÿ测量原理:热式质量流量测量法

Ÿ可调控气体:空气、氮气、二氧化碳、氧气、一氧化碳、甲烷、氨气等干燥纯净、无腐蚀性、无爆炸性气体,气源需用户自备

Ÿ调控通道:标配为2通道,通道1为Air-N2,通道2为CO2,多可扩展为4通道

Ÿ工作温度:15-50℃

Ÿ输入/输出接头:Parker Prestolok接头(6mm)

Ÿ输入压力:3-5bar

Ÿ密封:氟化橡胶

Ÿ显示屏:8×21字符液晶显示屏

Ÿ尺寸:37cm×28×15cm

Ÿ供电:115-230V交流电

Ÿ可联用仪器:FMT150藻类培养与在线监测系统、MC1000 8通道藻类培养与在线监测系统、FytoScope系列智能LED光源生长箱、用户自行设计的培养箱或反应器(可提供气路连接方案)等

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与FMT150藻类培养与在线监测系统联用的GMS150

与FytoScope智能LED光源生长箱联用的GMS150

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与中科院海洋所自行设计的培养装置联用的GMS150

GMS150版调控参数:

Ÿ小流量范围:0.02 - 1 ml/min

Ÿ大流量范围:20 - 1000 ml/min

Ÿ可定制流量范围:可在大流量和小流量之间定制。标准配置通道1(Air-N2): 20-1000 ml/min;通道2(CO2): 0.4-20 ml/min;可调控CO2浓度0.04% - *(实际调控浓度与流量有关)

Ÿ精度:±0.5%,加全量程±0.1%(3-5ml/min为全量程±1%,<3ml/min为全量程±2%)

Ÿ稳定性:<全量程±0.1%(参考1ml/min N2

Ÿ稳定时间:1~2s

Ÿ预热时间:30min预热达到精度,2min预热偏差±2%

Ÿ温度灵敏度:<0.05%/℃

Ÿ压力灵敏度:0.1%/bar(参考N2

Ÿ姿态灵敏度:1bar 压力下与水平面保持90°大*.2%(参考N2

Ÿ重量:7kg

GMS150-MICRO版调控参数:

Ÿ小流量范围:0.2 - 10 ml/min

Ÿ大流量范围:100 - 5000 ml/min

Ÿ可定制流量范围:可在大流量和小流量之间定制。标准配置通道1(Air-N2): 40-2000 ml/min;通道2(CO2): 0.8-40 ml/min;可调控CO2浓度0.04% - *(实际调控浓度与流量有关)

Ÿ精度:±1.5%,加全量程±0.5%

Ÿ重复性:流量<20 ml/min为全量程±0.5%,流量>20 ml/min为实际流量±0.5%

Ÿ稳定时间:1s

Ÿ预热时间:30min预热达到精度,2min预热偏差±2%

Ÿ温度灵敏度:零点<0.01%/℃,满度<0.02%/℃

Ÿ姿态灵敏度:1bar 压力下与水平面保持90°大*.5 ml/min(参考N2

Ÿ重量:5kg

应用案例:

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与FMT150藻类培养与在线监测系统联用研究蓝藻Cyanothece sp. ATCC 51142 的超日代谢节律(Cervený, 2013, PNAS)

产地:欧洲

参考文献:

1.Strenkert D, et al. 2019. Multiomics resolution of molecular events during a day in the life of Chlamydomonas. PNAS, 116 (6): 2374-2383

2.Sukačová K, et al. 2019. Optimization of microalgal growth and c*tion parameters for increasing bioenergy potential: Case study using the oleaginous microalga Chlorella pyrenoidosa Chick (IPPAS C2). Algal Research 40: 101519

3.Cordara A, et al. 2018. Analysis of the light intensity dependence of the growth of Synechocystis and of the light distribution in a photobioreactor energized by 635 nm light. PeerJ, 6:e5256, DOI 10.7717/peerj.5256

4.Cordara A, et al. 2018. Response of the thylakoid proteome of Synechocystis sp. PCC 6803 to photohinibitory intensities of orange-red light. Plant physiology and biochemistry, 132: 524-534

5.Alphen P, et al. 2018. Increasing the Photoautotrophic Growth Rate of Synechocystis sp. PCC 6803 by Identifying the Limitations of Its C*tion. Biotechnology Journal 13(8): 700764

6.Sarayloo E, et al. 2018. Enhancement of the lipid productivity and fatty acid methyl ester profile of Chlorella vulgaris by two rounds of mutagenesis. Bioresource Technology, 250: 764-769

7.Mitchell M C, et al. 2017. Pyrenoid loss impairs carbon-conceating mechanism induction and alters primary metabolism in Chlamydomonas reinhardtii. Journal of Experimental Botany, 68(14): 3891-3902

8.Hulatt C J, et al. 2017. Polar snow algae as a valuable source of lipids? Bioresource Technology, 235: 338-347

9.Jouhet J, et al. 2017. LC-MS/MS versus TLC plus GC methods: Consistency of glycerolipid and fatty acid profiles in microalgae and higher plant cells and effect of a nitrogen starvation. PLoS ONE 12(8): e0182423

10.Angermayr S A, et al. 2016. Culturing Synechocystis sp. Strain PCC 6803 with N2 and CO2 in a Diel Regime Reveals Multiphase Glycogen Dynamics with Low Maintenance Costs. Appl. Environ. Microbiol., 82(14):4180-4189

11.Acuña A M, et al. 2016. A method to decompose spectral changes in Synechocystis PCC 6803 during light-induced state transitions. Photosynthesis Research, 130(1-3): 237-249

关键词:控制器
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