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FytoScope立式智能LED光源生长箱

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公司名称北京易科泰生态技术有限公司
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厂商性质其他
更新时间2021/2/5 14:20:59
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公司介绍主营产品

北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年，为国家*，致力于生态-农业-健康研究监测技术推广、研发与服务，特别是在光谱成像技术（高光谱成像技术、叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术、无人机遥感等）、植物表型分析技术、呼吸与能量代谢测量技术等方面，与企业PSI、Specim、Sable等合作，致力于植物科学、土壤与地球科学、动物能量代谢、水体与藻类及生态环境领域*仪器技术的引进推广和技术研发集成，为植物/作物表型分析、生态修复及生态保护、能量代谢测量等提供规划设计、技术方案与系统集成、技术咨询与科技服务。公司技术团队80％以上具备硕士或硕士以上学位，并与*研究生院、中科院植物研究所、中科院动物所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学、中国海洋大学、陕西师范大学、内蒙古大学等建立了*的技术合作交流关系。公司下设有叶绿素荧光技术与植物表型业务部、EcoLab?实验室、光谱成像与无人机遥感事业部及无人机遥感研究中心（与陕西师范大学合作建立）、动物能量代谢实验室、内蒙古阿拉善蒙古牛生态牧业研究院及青岛分公司。实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、SPECIM高光谱仪、WORKSWELL红外热成像仪、EasyChem*、MicroMac1000水质在线监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro+光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、年轮分析仪等各种仪器设备，可以进行实验研究分析、实验培训等，欢迎与易科泰生态研究室开展合作研究。易科泰公司与欧洲PSI公司（叶绿素荧光技术与表型分析技术）、美国SABLE公司（动物能量代谢技术）、欧洲SPECIM公司（高光谱成像技术）、欧洲WORKSWELL公司（红外热成像技术）、欧洲Lightigo公司（LIBS元素分析技术）、欧洲BCN无人机遥感中心、欧洲ITRAX公司（样芯密度扫描与元素分析）、美国VERIS公司、英国ADC公司、德国UGT公司、欧洲SYSTEA公司等*生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系，在FluorCam叶绿素荧光成像与荧光测量技术、PlantScreen植物表型分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、光合作用与植物生态研究监测、土壤呼吸与碳通量研究监测、动物呼吸代谢测量、水质分析与藻类研究监测、CoreScanner样芯密度CT与元素分析技术、LIBS元素分析技术、无人机生态遥感技术等生态仪器技术及其系统方案集成有着丰富的经验，成为我国农业、林业、地球科学、生态环境研究等领域科技进步的重要研究力量。由公司研制生产的EcoDrone?无人机遥感平台、SoilTron?多功能小型蒸渗仪技术、SoilBox?土壤呼吸测量技术、PhenoPlot?轻便型作物表型分析系统、SCG-N土壤剖面CO2／O2梯度监测系统、植物生态监测技术、动物能量代谢测量技术等，在中科院修购项目、*学科群项目、CERN网络（生态系统监测网络）等项目中发挥重要作用 “工欲善其事，必先利其器”，易科泰公司将秉承“利其器，善其事”的经营理念，为国内生态-农业-健康研究与发展提供的技术方案和服务。

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FytoScope立式智能LED光源生长箱产品信息

FytoScope立式智能LED光源生长箱

FytoScope立式智能LED光源生长箱（FS130）能够精准地为高等植物提供良好的生长环境，并实时监控高等植物的生长。FS130配备能够提供高强度光照的LED光源，光源的强度、波长可调。显示屏可清晰显示所选参数和实测值。用户可直接调控多个参数，包括：光强、光质、温度、湿度，并可通过叶绿素荧光监测模块实时监测植物的生长状况。

FytoScope全系列LED光源生长箱都可以加装摇床用来培养藻类和蓝细菌。

技术参数

§监测参数：温度、光照、Ft、QY（需选配叶绿素荧光监测模块）

§外尺寸：100×55×62cm（H×W×D）

§内尺寸：69×42×40cm（H×W×D）

§内部体积：124L

§LED光源（两种标准光模块）：

1.WIR 光源（白+远红光 LEDs；冷白光或暖白光），共112颗LED，光强0-*精确可调

冷白光：0-1000µmol(photons)/m².s

暖白光：0-500µmol(photons)/m².s

大光照可升级（可选）：1500µmol(photons)/m².s（冷白光）1000µmol(photons)/m².s（暖白光）

2.RGBIR光源（红光+绿光+蓝光+远红光LEDs），共336颗LED

总光强：0-1000µmol(photons)/m².s，

总光强可升级（可选）：1500µmol(photons)/m².s（每种单色光大约500µmol(photons)/m².s）

*距光源30cm处测量

§LED光照板面积：25×35cm

§环境条件自动控制：精准控制光照模式、光照强度、温度和时间

§温度控制范围：+15℃至+50℃，可自动模拟昼夜周期中气温的变化

§温控升级（可选，不可同时选光源升级）：+10℃至+50℃，可定制更高的温度

§叶绿素荧光监测模块（可选）：可自动监测叶绿素荧光参数Ft、QY，用于光合活性研究、植物光合能力监测、植物胁迫检测、除草剂测试、植物生长情况监测等

§高精度气体混合系统（可选）：可控制多4种生长箱中的气体浓度与流速，标配版可控制空气/氮气和CO₂，气源需用户自备

§用户自定义编程控制（可选）：用户可自定义光强及持续时间，设置多达224种光照的阶段性变化，模拟昼夜周期变化、日升日落等自然界中光环境变化以及其他各种任意变化

§Daylight程序升级（可选）：模拟多云天气

§重量：55kg

§冷凝剂：R134a

§通风速度：250L/h

§供电：220-240V，50Hz

§功率：500W

应用案例

1.植物对气候变化的响应机制

Duarte使用FytoScope模拟昼夜变化研究了C3植物Halimione portulacoides 和C4植物海岸米草Spartina maritima在不同溶解CO₂条件下的变化，探讨盐沼植物对气候变化的响应。一方面FytoScope可以调控温度、光照及昼夜变化；另一方面FytoScope也能够精确控制CO₂浓度（Duarte，2014）。

图1.不同CO₂和光照条件下两种植物氧气的生产和消耗

Duarte使用溶解氧测量仪测量两种植物在不同CO₂和光照条件下的放氧速率（图1）；同时通过FytoScope中的叶绿素荧光监测仪来测量OJIP曲线、Fv、QY、ABS/CS、TR0/CS、ET0/CS等十余项荧光参数来分析对光合系统的影响（图2）。

图2.两种植物在不同CO₂条件下的OJIP动力学曲线

后，Duarte认为盐沼会通过水体的氧化作用与吸收过量CO₂的酸化缓冲作用，在气候变化的补偿效应中扮演重要的角色。

2.重金属胁迫

Santos则使用FytoScope来研究Zn在灯心草属模式种Juncus acutus中的超积累（Santos，2014）。通过设置一系列不同浓度的Zn胁迫梯度来培养J. acutus，测量发芽率、干重等生长指标（图3）。又用FP100叶绿素荧光测量仪来分析Zn对其光合系统的损伤（图4）。

图3. J. acutus在不同浓度Zn中的发芽情况

图4. J. acutus在不同浓度Zn中的OJIP动力学曲线

Santos终的结论是J. acutus表现出了对高浓度Zn的高耐受性，同时能够抵御Zn对叶绿体膜造成的过量氧化物积累的伤害。因此，J. acutus可以用于对陆地和水体的重金属污染生态修复。

3.高光胁迫

Domingues研究了硅藻Phaeodactylum tricornutum对高光照造成的光氧化胁迫的响应机制（Domingues，2012）。发现将低光适应（40µmol(photons)/m².s）后的硅藻进行高光（1250µmol(photons)/m².s）照射，会产生非光化学淬灭（NPQ）的快速响应（图5）。而且高光照对大量子产额（Fv/Fm）造成了和*相同的效果，即活性PSII反应中心的显著减少。

图5. P. tricornutum NPQ和Fv/Fm的变化

Domingues认为P. tricornutum在高光下会将总蛋白更多的分配给光抑制靶蛋白D1，并激活D1修复循环来限制光抑制。

产地：捷克

参考文献：

1.Siddiqui H, et. al, 2016, FHY3 and FAR1 Act Downstream of Light Stable Phytochromes, Front Plant Sci. 7, doi: 10.3389/fpls.2016.00175

2.Bielczynski LW, et. al, 2016, Effect of Light Acclimation on the Organization of Photosystem II Super- and Sub-Complexes in Arabidopsis thaliana, Front Plant Sci. 7, doi: 10.3389/fpls.2016.00105

3.Szymańska R, et. al, 2016, Titanium dioxide nanoparticles (100–1000 mg/l) can affect vitamin E response in Arabidopsis thaliana, Environmental Pollution, 213:957–965

4.Sztaman O, et. al, 2016, Fine tuning chloroplast movements through physical interactions between phototropins, J. Exp. Bot. 67 (17): 4963-4978

5.Dłużewska J, et. al, 2015, New prenyllipid metabolites identified in Arabidopsis during photo-oxidative stress, Plant, Cell & Environment, DOI: 10.1111/pce.12580

6.Hlaváčová M, et. al, 2015, The poplar clone (Populus maximowiczii a. Henry × P. nigra l.) growth under the coolled environment of growth chambers, TOWARDS CLIMATIC SERVICES, Nitra, Slovakia, 15th – 18th September 2015

7.Santos D, et. al, 2015, Biochemical and photochemical feedbacks of acute Cd toxicity in Juncus acutus seedlings: The role of non-functional Cd-chlorophylls, Estuarine, Coastal and Shelf Science, doi:10.1016/j.ecss.2015.10.005

8.Duarte B, et. al, 2014, Photochemical and biophysical feedbacks of C3 and C4 Mediterranean halophytes to atmospheric CO₂ enrichment confirmed by their stable isotope signatures, Plant Physiology and Biochemistry, 80:10-22

9.Duarte B, et. al, 2014, Light–dark O2 dynamics in submerged leaves of C3 and C4 halophytes under increased dissolved CO₂: clues for saltmarsh response to climate change, AoB PLANTS, doi: 10.1093/aobpla/plu067

10.Santos D, et. al, 2014, Unveiling Zn hyperaccumulation in Juncus acutus: Implications on the electronic energy fluxes and on oxidative stress with emphasis on non-functional Zn-chlorophylls, Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology, 140:228-239

11.Painter SC, et. al, 2014, Picoeukaryote distribution in relation to nitrate uptake in the oceanic nitracline, Aquatic Microbial Ecology, 72(3):195-213

12.Zhang B, et. al, 2014, Characterization of a Native Algae Species Chlamydomonas debaryana: Strain Selection, Bioremediation Ability, and Lipid Characterization, BioResources, 9(4):6130-6140