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ACE自动土壤呼吸测量仪

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北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年,为国家*,致力于生态-农业-健康研究监测技术推广、研发与服务,特别是在光谱成像技术(高光谱成像技术、叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术、无人机遥感等)、植物表型分析技术、呼吸与能量代谢测量技术等方面,与企业PSI、Specim、Sable等合作,致力于植物科学、土壤与地球科学、动物能量代谢、水体与藻类及生态环境领域*仪器技术的引进推广和技术研发集成,为植物/作物表型分析、生态修复及生态保护、能量代谢测量等提供规划设计、技术方案与系统集成、技术咨询与科技服务。公司技术团队80%以上具备硕士或硕士以上学位,并与*研究生院、中科院植物研究所、中科院动物所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学、中国海洋大学、陕西师范大学、内蒙古大学等建立了*的技术合作交流关系。 公司下设有叶绿素荧光技术与植物表型业务部、EcoLab?实验室、光谱成像与无人机遥感事业部及无人机遥感研究中心(与陕西师范大学合作建立)、动物能量代谢实验室、内蒙古阿拉善蒙古牛生态牧业研究院及青岛分公司。实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、SPECIM高光谱仪、WORKSWELL红外热成像仪、EasyChem*、MicroMac1000水质在线监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro+光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、年轮分析仪等各种仪器设备,可以进行实验研究分析、实验培训等,欢迎与易科泰生态研究室开展合作研究。 易科泰公司与欧洲PSI公司(叶绿素荧光技术与表型分析技术)、美国SABLE公司(动物能量代谢技术)、欧洲SPECIM公司(高光谱成像技术)、欧洲WORKSWELL公司(红外热成像技术)、欧洲Lightigo公司(LIBS元素分析技术)、欧洲BCN无人机遥感中心、欧洲ITRAX公司(样芯密度扫描与元素分析)、美国VERIS公司、英国ADC公司、德国UGT公司、欧洲SYSTEA公司等*生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系,在FluorCam叶绿素荧光成像与荧光测量技术、PlantScreen植物表型分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、光合作用与植物生态研究监测、土壤呼吸与碳通量研究监测、动物呼吸代谢测量、水质分析与藻类研究监测、CoreScanner样芯密度CT与元素分析技术、LIBS元素分析技术、无人机生态遥感技术等生态仪器技术及其系统方案集成有着丰富的经验,成为我国农业、林业、地球科学、生态环境研究等领域科技进步的重要研究力量。由公司研制生产的EcoDrone?无人机遥感平台、SoilTron?多功能小型蒸渗仪技术、SoilBox?土壤呼吸测量技术、PhenoPlot?轻便型作物表型分析系统、SCG-N土壤剖面CO2/O2梯度监测系统、植物生态监测技术、动物能量代谢测量技术等,在中科院修购项目、*学科群项目、CERN网络(生态系统监测网络)等项目中发挥重要作用 “工欲善其事,必先利其器”,易科泰公司将秉承“利其器,善其事”的经营理念,为国内生态-农业-健康研究与发展提供的技术方案和服务。
激光产品,数据采集器
ACE自动土壤呼吸测量仪 产品信息

前言

ACE土壤呼吸监测技术由英国ADC公司根据呼吸室法研制,ACE土壤呼吸监测仪(简称ACE)由可自动开/闭呼吸室、内置CO2分析仪的旋转臂及控制单元组成一个完整紧凑的野外监测仪器,有封闭式测量仪和开放式测量仪两种,包括封闭透明式、封闭非透明式、开放透明式、开放非透明式等所有呼吸室测量方法技术,可定点全自动连续监测土壤呼吸及土壤温度、土壤水分和PAR,整机防水防尘,数据自动存储到存储卡中,12V 40Ah蓄电池可在野外连续监测近1个月时间。

ACE是目前世界上可*放置在野外进行土壤呼吸监测的高度集成仪器。

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上图中研究人员分别使用开放式透明(左)和开放式非透明(右)两种呼吸室进行测量

应用领域

ü碳收支平衡研究,为碳交易提供准确的数据来源

ü与气候变化数据相结合,研究温室气体排放对气候变化的影响

ü与涡度相关数据结合,对通量变化做出合理解释

ü对土壤呼吸的影响因子及调控机制进行研究

ü不同作物或耕作类型或杀虫剂对土壤呼吸的影响

ü微生物生态学

ü土壤污染的恢复研究

ü填埋垃圾场土壤呼吸状态研究

工作原理

ACE采用两种测量模式:封闭式和开放式。两种模式采用不同的工作原理。

1:封闭式测量原理:开始测定前呼吸罩自动关闭,形成密闭的呼吸室。紧邻呼吸室的机械臂内,具有一个高精度的CO2红外气体分析器(IRGA)。每隔10s对呼吸室的气体进行分析,在测量结束后通过分析数据自动计算土壤表面通量(土壤呼吸值)。

2:开放式测量原理:开始测量前呼吸罩自动关闭,测量过程中,呼吸室与环境气体相连,顶部设有压力释放装置,保持内外气压稳定。在一定流速下达到稳态后测量泵入和泵出气体的CO2浓度差Δc,自动计算出通量值。

功能特点

l高度集成、全自动化、一体式土壤呼吸监测系统,自动开/闭呼吸室,CO2分析仪、数据采集器及操作系统集成在一起,便于携带移动,无需额外配置计算机等外部设备,无需管路连接等复杂耗时的安装过程

l内置微机五键式操作系统,大型240×64点阵LCD屏用于设置操作、数据浏览及诊断

l有封闭式和开放式供选配,在干旱区等土壤呼吸微弱的情况下,建议选配封闭式测量

l呼吸室面积达415cm2,有透明呼吸室和非透明呼吸室供选择,前者适合用于测量低矮草本或禾苗群落碳通量,或用于测量有大量光合海藻类(如蓝藻)、苔藓地衣类植物的土壤碳通量(既有光合作用又有呼吸作用)

l高精度、高灵敏度CO2分析仪,分辨率为1ppm

l可连接6个土壤温度传感器,4个土壤水分传感器,以监测不同剖面土壤水分与温度

l供电方式可从太阳能、蓄电池、220V交流电中三选一

l可购买多个ACE进行多点监测,可选配几个透明呼吸室和几个非透明呼吸室用于监测分析土壤及地上光合生物(如生物结皮、苔藓、低矮植被等)总光合、净光合、总呼吸、净呼吸及其相互关系和昼夜动态变化格局等

技术指标

l红外气体分析仪:内置于土壤呼吸室,气路很短,响应时间快

lCO2:测量范围:标准范围0-896ppm(可定制大量程和范围) 分辨率:1ppm

lPAR:0-3000μmol m-2 s-1硅光电池

l土壤温度热电阻探头:测量范围:-20-50℃,可接多达6个土壤温度探头

l土壤水分探头SM300:测定范围0-100vol%;精度3%(针对土壤进行标定后);测量土体范围:55mm x 70mm;可接多达4个土壤水分探头

l土壤水分探头Theta:测量范围0-1.0 m3.m-3;精度±1%(特殊标定后)探头尺寸;探针60 mm 长,探头总长207mm;可接多达4个土壤水分探头

l呼吸室流量控制:200-5000ml/min (137-3425 µmol sec-1),精度:±流速的3%

l呼吸室类型:开放透明、开放非透明、封闭透明、封闭非透明四种呼吸室供选

l仪器操作:独立主机,不需要PC/PDA

l数据纪录:2G移动存储卡(SD),可存储800万组以上数据

l电源供应:外部电池、太阳能板或风力供应,12v、40Ah蓄电池长可持续供电28天,仅网络式有内部电池1.0Ah

l数据下载:读取SD卡或使用USB连接

l电子部分连接:坚固、防水的3pin插口(头)

l程序:界面友好,通过5键控制

l气体连接:3 mm气路接头

l显示:240×64点阵 LCD屏幕

l尺寸:82×33×13cm

l密封室体积:2.6 L

l开放室体积:1.0 L

l土壤呼吸罩直径:23 cm

l重量:9.0 kg

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上图左为预埋钢圈,右为ACE连接土壤水分和土壤度传感器实物图

呼吸室的选配

封闭式与开放式的差别

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封闭式测量在测定时呼吸室*闭合。测定简单,速度快 (5-10mins),应用普遍。但精确度较低


透明与非透明的区别

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非透明呼吸室,只测定呼吸(包括土壤呼吸和植物地上部呼吸)

操作屏幕和结果

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应用案例

屈冉等(2010)在秦岭利用ACE研究了土壤微生物和有机酸对土壤呼吸时的影响。研究显示土壤呼吸速率与土壤细菌、放线菌、草酸和柠檬酸呈极显著正相关。

产地

英国

选配技术方案

1)可选配多个ACE进行多点监测,与ACE MASTER主机组成网络监测方案

2)可选配土壤氧气测量模块

3)可选配高光谱成像以评估土壤微生物呼吸作用

4)可选配红外热成像研究土壤水分、温度变化对呼吸影响

5)可选配ECODRONE®无人机平台搭载高光谱和红外热成像传感器进行时空格局调查研究

部分参考文献

1.K. Krištof, T. Šima*, L. Nozdrovický and P. Findura (2014). The effect of soil tillage intensity on carbon dioxide emissions released from soil into the atmosphere” Agronomy Research 12(1), 115–120.

2.Xinyu Jiang, Lixiang Cao, Renduo Zhang (2014). Changes of labile and recalcitrant carbon pools under nitrogen addition in a city lawn soil. Journal of Soils and Sediments, March 2014, Volume 14, Issue 3, pp 515-524.

3.Cannone, N., Augusti, A., Malfasi, F., Pallozzi, E., Calfapietra, C., Brugnoli, E. (2016). The interaction of biotic and abiotic factors at multiple spatial scales affects the variability of CO2 fluxes in polar environments” Polar Biology September 2016, Volume 39, Issue 9, pp 1581–1596.

4.Liu, Yi, et al. (2016). Soil CO2 Emissions and Drivers in Rice–Wheat Rotation Fields Subjected to Different Long‐Term Fertilization Practices.” CLEAN–Soil, Air, Water (2016). DOI: 10.1002/clen.201400478 (/doi/10.1002/clen.201400478/abstract).

5.Xubo Zhang, Minggang Xu, Jian Liu, Nan Sun, Boren Wang, Lianhai Wu (2016). Greenhouse gas emissions and stocks of soil carbon and nitrogen from a 20-year fertilised wheat maize intercropping system: A model approach” Journal of Environmental Management, Volume 167, Pages 105-114, ISSN 0301-4797, /10.1016/j.jenvman.2015.11.014. (/science/article/pii/S0301479715303686).

6.Altikat S., H. Kucukerdem K., Altikat A. (2018). Effects of wheel traffic and farmyard manure applications on soil CO2 emission and soil oxygen content” Thesis submitted from the “Iğdır University Agriculture Faculty Department of the Biosystem Engineering.

7.Cannone, N. Ponti, S., Christiansen, H.H., Christensen, T.R., Pirk, N., Guglielmin, M. (2018). “Effects of active layer seasonal dynamics and plant phenology on CO2 land atmosphere fluxes at polygonal tundra in the High Arctic, Svalbard” CATENA, Vol 174 (March 2019) 142-153. /science/article/pii/S0341816218305009 .

8.Uri, V., Kukumägi, M. Aosaar, J.,Varik, M., Becker, H., Auna, K., Krasnova, A.,Morozova, G.,Ostonen, I., Mander, U., Lõhmus, K.,Rosenvald,K., Kriiska, K., Soosaarb, K., (2018). The carbon balance of a six-year-old Scots pine (Pinus sylvestris L.) Forest Ecology Management 2019. https://doi.org/10.1016/j.foreco.2018.11.012

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